药品和个人护理品(PPCPs)作为一种新兴污染物越来越受到世界各国的关注[1]。目前广泛应用于人类和动物疾病治疗及预防的药物达4 000多种,且随着社会经济的发展呈逐年增高的趋势[2]。然而药物在人体和动物体内只有一小部分能被吸收,大部分会随着尿液和粪便排出体外,进入环境[3-4]。可替宁是烟草中尼古丁在人体中代谢后的主要产物,可待因常用于麻醉镇痛、治疗咳嗽等,咖啡因和1, 7-二甲基黄嘌呤是咖啡中的成分及代谢物。这4种兴奋剂类化合物在日常生活中应用广泛,其在环境中的残留会通过食物链和饮用水进入人体,危害人类健康。现选用可替宁、可待因、1, 7-二甲基黄嘌呤和咖啡因作为研究对象,采用在线固相萃取前处理方法,高效液相色谱-串联质谱法测定饮用水中上述4种兴奋剂类化合物。通过优化仪器分析参数和样品前处理过程,建立准确高效的检测体系,以满足实际饮用水样品的检测。
1 实验部分 1.1 仪器与试剂仪器:岛津LC-MS-MS 8060型液相色谱三重四极杆质谱仪,配有电喷雾离子源(ESI)(日本岛津公司);InertSustain AQ-C18色谱柱(日本GL Sciences公司);AOE在线固相萃取系统(日本岛津公司);HLB Direct Connect HP固相萃取柱2支(20 μm×2.1 mm×30 mm,美国Waters公司);0.22 μm玻璃纤维滤膜[月旭科技(上海)股份有限公司];和泰Dura纯水仪(12V,上海和泰仪器有限公司)。
试剂:4种兴奋剂混标(100 mg/L,溶于甲醇,上海安谱实验科技股份有限公司);4种兴奋剂标准使用液(用甲醇稀释至50和5 μg/L,-10 ℃以下避光可保存1个月);内标贮备液(可替宁-d3,纯度98%,上海安谱实验科技股份有限公司);内标使用液(用甲醇稀释至50 μg/L,-10 ℃以下避光保存)。乙腈、甲醇、异丙醇(均为色谱纯),甲酸(质谱级),硫代硫酸钠(美国化学协会标准级),氨水(分析纯),以上试剂均购于月旭科技(上海)股份有限公司;实验用水为超纯水(电阻率18.2 MΩ·cm)。
1.2 仪器工作条件 1.2.1 液相色谱条件流动相为0.1%的甲酸水溶液(A相)和乙腈(B相),柱温40 ℃。液相色谱流动相梯度洗脱程序见表 1,15.00 min结束洗脱程序。
时间/ min |
流量/ (mL·min-1) |
流动相占比/% | |
A相 | B相 | ||
0 | 0.4 | 95 | 5 |
2.30 | 0.4 | 95 | 5 |
8.50 | 0.4 | 25 | 75 |
9.00 | 0.4 | 0 | 100 |
11.60 | 0.4 | 0 | 100 |
11.70 | 0.4 | 95 | 5 |
1.2.2 在线固相萃取系统条件
在线固相萃取系统通过阀切换可实现双柱交叉进样,提高工作效率。C泵A路为0.1%甲酸水溶液,C泵B路为乙腈,进样体积1.0 mL。在线固相萃取系统条件见表 2。
时间/ min |
流量/ (mL·min-1) |
C泵 |
0 | 2 | A路(100%),初始阀位于“1”(“0”)号位 |
1.50 | 2 | A路(100%),阀切换至“0”(“1”)号位,进行另一柱的清洗,待上样 |
1.60 | 4 | 切换至B路(100%) |
3.60 | 4 | 切换至A路(100%) |
7.60 | 4 | A路(100%) |
7.70 | 0.1 | A路(100%) |
1.2.3 质谱参考条件
质谱条件如下:电喷雾(ESI)离子源,正离子模式;接口温度300 ℃;进样口温度250 ℃;加热块温度400 ℃;雾化器流量3 L/min;加热器流量10 L/min;干燥器流量10 L/min;多反应监测(MRM)方式,具体条件见表 3。
序号 | 化合物 | 母离子(m/z) | 子离子(m/z) | Q1偏差/V | 碰撞电压/V | Q3偏差/V |
1 | 可替宁-d3 | 180.30 | 80.00 | -20 | -26 | -30 |
180.30 | 101.05 | -10 | -16 | -17 | ||
2 | 可替宁 | 177.00 | 79.90 | -21 | -26 | -11 |
177.00 | 98.10 | -10 | -22 | -15 | ||
3 | 1, 7-二甲基黄嘌呤 | 181.15 | 124.05 | -21 | -21 | -19 |
181.15 | 55.05 | -11 | -31 | -20 | ||
4 | 可待因 | 299.90 | 165.00 | -15 | -41 | -14 |
299.90 | 215.05 | -15 | -26 | -20 | ||
5 | 咖啡因 | 195.10 | 138.15 | -10 | -20 | -24 |
195.10 | 110.10 | -10 | -25 | -17 |
1.3 实验方法
根据文献[5]推荐方法,采用含HLB填料的萃取柱作为在线固相萃取柱。饮用水样品用500 mL玻璃瓶采集至满瓶,密封。水样经0.22 μm玻璃纤维滤膜过滤后直接上机分析。
2 结果与讨论 2.1 上样条件的选择在线固相萃取系统C泵A路上样,当A路溶液分别选为水相(中性)、0.1%甲酸水溶液(酸性)和0.1%氨水水溶液(碱性)时,4种兴奋剂在酸性条件下出峰响应较中性、碱性条件下好,故选定C泵A路溶液为0.1%甲酸水溶液。C泵B路为有机相乙腈,作用是清洗待上样富集柱。样品经过滤后直接上机,样品中目标物被HLB柱富集,通过阀切换HLB柱接入串联质谱系统,经A相和B相梯度洗脱(表 1),目标物被AQ-C18柱分离,然后进入串联质谱系统进行分析。
2.2 水样除余氯影响分析取某地自来水作为实际样品,通过加硫代硫酸钠和不加硫代硫酸钠对水样进行分析。结果表明,在相同的加标浓度下,水样不加硫代硫酸钠除余氯时,可待因和1, 7-二甲基黄嘌呤2种物质峰响应差,基本不出峰(图 1),化合物序号同表 3;而在加了硫代硫酸钠的水样中,可待因和1, 7-二甲基黄嘌呤均有较好的出峰和响应强度(图 2)。原因可能是在未加硫代硫酸钠除余氯的水样中,可待因和1, 7-二甲基黄嘌呤与余氯反应[6-8],导致其浓度降低。因此,在水样检测前,需加入硫代硫酸钠除去余氯,减少对样品检测结果的干扰。此外,实验中需对所用的试剂耗材做干扰测试,确保对实验结果无影响。
2.3 工作曲线与测定下限
分别吸取不同体积的标准使用液,用纯水稀释至10 mL,配制7个质量浓度的标准系列。4种兴奋剂的质量浓度分别为1.0,2.0,5.0,10.0,20.0,50.0和100.0 ng/L,分别于标准系列溶液中加入10 μL内标物使用液,使内标物的质量浓度为50 ng/L,按照1.2所述仪器工作条件进行分析。以标准系列溶液质量浓度与内标物质量浓度比值为横坐标,以目标组分峰面积与内标物峰面积比值为纵坐标,绘制校准曲线(表 4)。依据文献[9],用空白样品加标配制2.0 ng/L的水样,重复测定7次,以3倍标准偏差作为检出限,4倍检出限作为测定下限。
序号 | 化合物 | 校准曲线 | 相关系数(r2) | 检出限/ (ng·L-1) |
测定下限/(ng·L-1) |
1 | 可替宁 | y=1.41 x+0.046 | 0.995 | 1.75 | 7.00 |
2 | 1, 7-二甲基黄嘌呤 | y=0.834 x+0.016 | 0.996 | 0.633 | 2.53 |
3 | 可待因 | y=1.04 x-0.001 | 0.998 | 1.11 | 4.44 |
4 | 咖啡因 | y=0.906 x+0.084 | 0.994 | 0.860 | 3.44 |
2.4 精密度和准确度实验
依据文献[5]和[9]关于方法验证和回收率的要求,采用在线固相萃取系统进样,以某饮用水为统一样品,测定2种不同浓度加标样品的精密度和准确度,结果见表 5。
序号 | 化合物名称 | ρ(实际样品)/(ng·L-1) | 加标量/ (ng·L-1) |
测定均值/(ng·L-1) | RSD/ % |
加标回收率/% |
1 | 可替宁 | 6.38 | 10 | 16.2 | 0.582 | 91.1~103 |
80 | 98.9 | 3.40 | 109~120 | |||
2 | 1, 7-二甲基黄嘌呤 | — | 10 | 8.68 | 0.211 | 82.9~89.9 |
80 | 76.1 | 4.15 | 86.4~101 | |||
3 | 可待因 | — | 10 | 12.4 | 0.371 | 119~128 |
80 | 98.4 | 3.42 | 117~129 | |||
4 | 咖啡因 | — | 10 | 8.48 | 0.287 | 80.0~88.5 |
80 | 74.9 | 2.57 | 88.3~98.1 |
由表 5可见,某饮用水样品测定值的相对标准偏差(RSD)<5%,加标回收率为80.0%~129%,方法的精密度和准确度良好,可以满足饮用水样品的检测分析。
3 结语采用在线固相萃取样品前处理方法,用具有MRM模式的高效液相色谱-串联质谱法检测饮用水中的4种兴奋剂,方法检出限为0.633~1.75 ng/L,加标回收率为80.0%~129%,多次测定均值的RSD<5%,检出限低,精密度和准确度好,可满足饮用水样品的检测分析。同时该方法具有前处理自动化程度高、操作简便等特点,在实际样品检测中可以节省水样处理时间,提高工作效率。
[1] |
王樱凝, 崔迪, 庞长泷, 等. 水中PPCPs的污染现状及其控制技术研究进展[J]. 中国给水排水, 2015, 31(24): 25-29. |
[2] |
王琦, 武俊梅, 彭晶倩, 等. 饮用水系统中药物和个人护理用品的研究进展[J]. 环境化学, 2018, 37(3): 453-461. |
[3] |
刘莹, 管运涛, 水野忠雄, 等. 药品和个人护理用品类污染物研究进展[J]. 清华大学学报(自然科学版), 2009(3): 368-372. DOI:10.3321/j.issn:1000-0054.2009.03.014 |
[4] |
LIU J L, WONG M H. Pharmaceuticals and personal care products(PPCPs):A review on environmental contamination in China[J]. Environment International, 2013, 59: 208-224. DOI:10.1016/j.envint.2013.06.012 |
[5] |
U.S. EPA.Pharmaceuticals and Personal Care Products in Water, Soil, Sediment, and Biosolids by HPLC/MS/MS: 1694-2007[S].2007.
|
[6] |
QIAO T J, YU Z R, ZHANG X H, et al. Occurrence and fate of pharmaceuticals and personal care products in drinking water in southern China[J]. Journal of Environmental Monitoring, 2011, 13(11): 3097-3103. DOI:10.1039/c1em10318k |
[7] |
BOYD G R, REEMTSMA H, GRIMM D A, et al. Pharmaceuticals and personal care products(PPCPs)in surface and treated waters of Louisiana, USA and Ontario, Canada[J]. Science of the Total Environment, 2003, 311(1-3): 135-149. DOI:10.1016/S0048-9697(03)00138-4 |
[8] |
GIB S J, STACKELBERG P E, FURLONG E T, et al. Persistence of pharmaceuticals and other organic compounds in chlorinated drinking water as a function of time[J]. Science of The Total Environment, 2007, 373(1): 240-249. DOI:10.1016/j.scitotenv.2006.11.003 |
[9] |
环境保护部.环境监测分析方法标准制修订技术导则: HJ 168—2010[S].北京: 中国标准出版社, 2010.
|